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更新時(shí)間:2026-03-09
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TRIzol法是RNA提取的金標(biāo)準(zhǔn)方法,由Chomczynski和Sacchi在1987年首-次描述,至今仍是實(shí)驗(yàn)室常用的技術(shù)之一。它基于酸性酚-異硫氰酸胍單相裂解系統(tǒng),能高效裂解細(xì)胞并抑制RNase活性。本文將為您詳細(xì)拆解TRIzol法提取RNA的每一步,并指出操作中的關(guān)鍵注意事項(xiàng),助您成功獲得高質(zhì)量RNA。
樣本:已處理好的組織勻漿或細(xì)胞裂解液(每50-100 mg組織或1×10?細(xì)胞加入1 mL TRIzol)。
試劑:氯仿、異丙醇、75%乙醇(用RNase-free水配制)、RNase-free水。
耗材:RNase-free的1.5 mL離心管、槍頭。
儀器:低溫離心機(jī)、渦旋振蕩器、移液器。
將裝有TRIzol裂解液的樣品室溫孵育5分鐘,使核蛋白復(fù)合物完-全解離。
加入氯仿:按每1 mL TRIzol加入0.2 mL氯仿的比例加入氯仿。
劇烈混勻:蓋緊離心管蓋,用手用力上下?lián)u晃15秒,使溶液充分乳化為粉紅色均一液體。
【關(guān)鍵點(diǎn)1】 :切勿使用渦旋振蕩器,渦旋可能導(dǎo)致DNA斷裂并污染RNA。必須用手劇烈搖晃,確保兩相充分接觸。
【關(guān)鍵點(diǎn)2】 :混勻不徹-底會(huì)嚴(yán)重影響RNA的得率和純度。
室溫孵育2-3分鐘。
離心:4°C,12,000g,離心15分鐘。
觀察分層:離心后,混合物分為三層:
上層無(wú)色水相:含RNA(約占總體積的50-60%)。
中間白色相層:含DNA和蛋白質(zhì)。
下層紅色有機(jī)相:含蛋白質(zhì)和酚。
小心吸取上層水相:用微量移液器,將槍頭傾斜,小心穿過(guò)上層,沿管壁緩慢吸取上層水相,轉(zhuǎn)移至一個(gè)新的RNase-free離心管中。
【關(guān)鍵點(diǎn)3】 :務(wù)必不要吸取任何中間相物質(zhì)。為防止DNA污染,即使?fàn)奚恍┗厥章?,也只吸取上層水相?/span>80-90%(例如,1 mL TRIzol對(duì)應(yīng)約600 μL水相,建議只吸500 μL)。
加入異丙醇:按每1 mL初始TRIzol用量,加入0.5 mL異丙醇。
混勻:上下顛倒離心管,充分混勻。
【關(guān)鍵點(diǎn)4】 :混勻不徹-底會(huì)導(dǎo)致RNA無(wú)法有效沉淀。
室溫孵育10分鐘:
可選優(yōu)化:對(duì)于微量RNA樣品(<1 μg),可在此步加入1 μL糖原(20 mg/mL)作為載體,提高沉淀效率。為防止溫度過(guò)高導(dǎo)致降解,也可在冰上或-20°C冰箱中進(jìn)行沉淀。
離心:4°C,12,000g,離心10分鐘。離心后,在管底或管側(cè)可見(jiàn)白色凝膠狀RNA沉淀。
棄上清:小心倒掉上清,或用移液器吸除,注意不要丟失沉淀。
加入75%乙醇洗滌:按每1 mL初始TRIzol用量,加入至少1 mL 75%乙醇。
懸浮沉淀:輕輕渦旋或上下顛倒,使沉淀脫離管壁,懸浮在乙醇中。
【關(guān)鍵點(diǎn)5】 :這一步的目的是洗去殘留的異丙醇和鹽離子。必須確保沉淀被充分洗滌。
離心:4°C,7,500g,離心5分鐘。
重復(fù)洗滌:棄上清,重復(fù)步驟3-5,共洗滌兩次。
注意:沉淀在75%乙醇中非常穩(wěn)定,可在2-8°C保存至少一周,或-20°C長(zhǎng)期保存。
棄盡乙醇:第二次洗滌離心后,小心倒掉上清,用微量移液器將管底殘留的液體吸干。
干燥沉淀:打開(kāi)管蓋,室溫空氣干燥5-10分鐘。
【關(guān)鍵點(diǎn)6】 :切勿過(guò)度干燥。當(dāng)沉淀由白色不透明變?yōu)榘胪该骰蛲该髂z狀時(shí),即為干燥完成。過(guò)度干燥的RNA極難溶解。
【關(guān)鍵點(diǎn)7】 :切勿真空離心干燥,這會(huì)導(dǎo)致RNA不可逆地變性,溶解度大大降低。
溶解RNA:根據(jù)沉淀量,加入20-100 μL RNase-free水。
重懸:用移液槍反復(fù)吹打幾次,使RNA充分溶解。如果RNA過(guò)于干燥,可在55-60°C水浴中溫育10分鐘助溶,但通常不建議加熱,以免加速降解。
取少量RNA溶液,使用紫外分光光度計(jì)測(cè)量濃度和純度(A260/A280比值應(yīng)在1.8-2.0之間),并用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)完整性。
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