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更新時間:2026-03-02
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免疫共沉淀(Co-IP)是驗證蛋白相互作用的經(jīng)典技術(shù),但實驗操作對條件要求嚴(yán)苛,全程需保持非變性環(huán)境,任何一個步驟的疏漏都可能導(dǎo)致實驗失敗。本文整理了免疫共沉淀標(biāo)準(zhǔn)實驗流程,從蛋白提取到蛋白洗脫全程手把手講解,新手也能輕松上手。
實驗前提:全程在 4℃冰箱或冰上操作,所有與樣本接觸的試劑、離心管、槍頭均需提前預(yù)冷;裂解液、洗滌緩沖液中需加入新鮮的蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑,防止蛋白降解和磷酸化修飾丟失。
1. 取培養(yǎng)至對數(shù)期的細(xì)胞(或預(yù)處理后的組織樣本),用預(yù)冷的 PBS 輕輕洗滌 2 次,徹-底棄盡上清,避免殘留 PBS 稀釋裂解液;
2. 向樣本中加入非變性裂解液(常用含 1% NP-40 或 Triton X-100 的裂解液),裂解液體積根據(jù)樣本量調(diào)整(如 6cm 培養(yǎng)皿加 200-300μl);
3. 冰上裂解 30min,期間每 10min 輕輕顛倒離心管一次,讓裂解液與樣本充分接觸;
4. 4℃、12000rpm 離心 10min,吸取上清液至新的預(yù)冷離心管中,棄去底部的細(xì)胞 / 組織碎片沉淀;
5. 留取少量上清液作為Input 樣品(陽性對照,驗證目的蛋白正常表達(dá)),-20℃暫存?zhèn)溆谩?/span>
向提取的蛋白上清液中加入無抗體偶聯(lián)的對照樹脂 / 磁珠(蛋白 A/G 磁珠),4℃緩慢搖床孵育 30min;磁珠會吸附裂解液中的雜蛋白、細(xì)胞碎片等易產(chǎn)生非特異性結(jié)合的物質(zhì),孵育后通過磁力架吸附磁珠,將上清液轉(zhuǎn)移至新的預(yù)冷離心管中,棄去吸附了雜蛋白的磁珠。
? 這一步是減少實驗假陽性、降低背景的核心,不可省略。
1. 將預(yù)清除后的上清液平均分為實驗組和IgG 對照組(兩組體積一致,排除抗體非特異性結(jié)合);
2. 實驗組加入適量誘餌蛋白的特異性抗體(常規(guī)用量 1-5μg / 樣本,根據(jù)抗體效價調(diào)整),IgG 對照組加入等量的同物種非特異性 IgG;
3. 兩組均在 4℃緩慢搖床孵育 2-4h,若誘餌蛋白豐度低,可孵育過夜,提高抗體與誘餌蛋白的結(jié)合效率。
向?qū)嶒灲M和 IgG 對照組中分別加入預(yù)冷的蛋白 A/G 瓊脂糖珠 / 磁珠,4℃緩慢搖床孵育 2-4h;蛋白 A/G 會特異性結(jié)合抗體的 Fc 段,形成 “磁珠 - 蛋白 A/G - 抗體 - 誘餌蛋白 - 互作蛋白" 的固相復(fù)合物,完成蛋白沉淀的核心過程。
1. 孵育結(jié)束后,通過磁力架吸附磁珠,棄去上清液,保留磁珠復(fù)合物;
2. 向磁珠中加入預(yù)冷的洗滌緩沖液(去污劑濃度降至 0.1%,保護(hù)蛋白復(fù)合物不解離),輕輕渦旋混勻后,磁力架吸附磁珠并棄去上清;
3. 重復(fù)洗滌 3-5 次,若實驗背景過高,可增加至 5 次;最后-次洗滌后,用微量槍頭吸盡離心管底部殘留的洗滌緩沖液,避免稀釋后續(xù)樣品。
? 洗滌時動作輕柔,切勿吸走磁珠,防止目的蛋白丟失。
向洗滌后的磁珠復(fù)合物中加入 2×SDS 上樣緩沖液,渦旋混勻后,95℃金屬浴加熱 5-10min,使蛋白從磁珠 - 抗體復(fù)合物中洗脫并變性;加熱后短暫離心,吸取上清液,即可用于后續(xù)的 Western Blot(WB)驗證或質(zhì)譜(MS)鑒定。
遵循上述標(biāo)準(zhǔn)化流程,并結(jié)合預(yù)實驗優(yōu)化抗體用量和洗滌條件,您將能穩(wěn)定地獲得高質(zhì)量的免疫共沉淀數(shù)據(jù),為蛋白質(zhì)功能研究提供可靠依據(jù)。
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